In diesen zwei Videos, jeweils ca. 4:40 lang, wir zeigen Ihnen dieses Produkt und erklären den Workflow.
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Der Steroid Panel LC-MS Kit ist ein CE-IVDD Reagenzienkit zur Bestimmung von 18 Steroiden in humanem Serum und EDTA-Plasma mithilfe von Festphaseexraktion und Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie(LC-MS). Die Analyten sind 17 Steroidhormonen (11-deoxycorticosterone 11-deoxycortisol, 17-hydroxypregnenolone, 17-hydroxyprogesterone, 21-deoxycortisol, aldosterone, androstenedione, corticosterone, cortisol, cortisone, dehydroepiandrosterone, dehydroepiandrosterone sulfate, dihydrotestosterone, estradiol, estrone, progesterone, testosterone) und der synthetische Glukokorticoid Dexamethason.
Steroidhormone sind wichtige Signalmoleküle, die viele physiologische und die damit verbundenen biochemischen Prozesse regulieren. In der Regel werden sie aufgrund ihrer primären physiologischen Funktionen in zwei große Gruppen unterteilt: Kortikosteroide, die hauptsächlich in der Nebenniere gebildet werden und Sexualsteroide, die hauptsächlich aus den Gonaden und der Plazenta stammen.1,2 Die Kortikosteroide werden weiter in Mineralokortikoide und Glukokortikoide unterteilt. Erstere sind am Salz- und Wasserhaushalt beteiligt, während letztere den Energiestoffwechsel beeinflussen. Sexualsteroide werden aufgrund ihrer Rolle bei der Schwangerschaft sowie der männlichen und weiblichen sexuellen Entwicklung in Gestagene, Androgene und Östrogene unterteilt. So dient die Messung von Sexualsteroiden als physiologische Marker der Fruchtbarkeit. Steroidhormone üben ihre Funktionen aus, indem sie an ihre jeweiligen Rezeptoren binden und entweder Genexpressionsereignisse oder Signalübermittlung mittels Kinasen auslösen.3,4.
Die Enzyme, die für die Biosynthese von Steroidhormonen verantwortlich sind, lassen sich in zwei Gruppen einteilen: Cytochrom P450 (CYP) und Hydroxysteroid-Dehydrogenasen (HSD). Loss-Of-Function-Mutation (Funktionsverlustmutation) und Gain-Of-Function-Mutation der Gene von vielen dieser Enzyme führen zu einer Störung der Hormonhomöostase und sind so Ursache vieler verschiedener Krankheiten.5 Endokrine Störungen wie die kongenitale Nebennierenhyperplasie, Aromatasemangel und das Syndrom des offensichtlichen Mineralokortikoidexzesses sind stark genetisch bedingt, während bestimmte Fälle von Hyperandrogenismus, Amenorrhoe und Nebenniereninsuffizienz ebenfalls durch diese Enzymläsionen verursacht werden.5
Eine weitere häufige Ursache für Störungen im Zusammenhang mit Steroidhormonen wie das Cushing-Syndrom, Aldosteronismus oder Nebenniereninzidentalome sind Neoplasmen, die häufig mit veränderten Hormonspiegeln einhergehen.6–8 Da Steroide eine zentrale Rolle bei der Regulierung der sexuellen Entwicklung spielen, umfasst die Diagnose im Zusammenhang mit der Fruchtbarkeit häufig auch Steroidtests.9,10 Eine vorzeitige Adrenarche kann später Hyperandrogenismus und ein polyzystisches Ovarialsyndrom verursachen und die Fruchtbarkeit beeinträchtigen.11
Angesichts des engen Zusammenhangs zwischen Steroidhormonen und endokrinen Störungen sind Steroidtests zu einem festen Bestandteil der diagnostischen Verfahren geworden und werden in vielen klinischen Praxisleitlinien empfohlen.6,8,12–14 LC-MS-basierte Assays haben sich zum Goldstandard entwickelt und gelten als Stand der Technik bei Steroidhormontests.15-18 Ihre Verwendung wird auch in klinischen Praxisleitlinien empfohlen.6,12
Die Kalibratorbereiche im Kit sind:
| Analyt | Kalibratorbereich ng/mL |
|---|---|
| 11-Deoxycorticosteron | 0.04 - 5.13 |
| 17-hydroxyprogesteron | 0.10 - 12.82 |
| 21-Deoxycortisol | 0.10 - 12.82 |
| Aldosteron | 0.10 - 4.59 |
| Androstenedion | 0.10 - 12.82 |
| Corticosteron | 0.30 - 38.47 |
| Dexamethason | 0.50 - 64.12 |
| DHEA | 1.0 - 45.9 |
| DHEAS | 50 - 6412 |
| Dihydrotestosteron | 0.15 - 1.57 |
| Cortison | 0.5 - 64.1 |
| Cortisol | 2.0 - 256.5 |
| Progesteron | 0.10 - 12.82 |
| 11-Deoxycortisol | 0.10 - 12.82 |
| Testosteron | 0.04 - 13.42 |
| 17-Hydroxypregnenolon | 0.30 - 38.47 |
| Estron | 0.01 - 1.28 |
| Estradiol | 0.03 - 3.85 |
Für konkrete Daten konsultieren Sie bitte die Arbeitsanweisung in der Download Box oben auf der rechten Seite.
(1) Greaves, R. F.; Jevalikar, G.; Hewitt, J. K.; Zacharin, M. R. A Guide to Understanding the Steroid Pathway: New Insights and Diagnostic Implications. Clinical Biochemistry 2014, 47 (15), 5–15. https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2014.07.017.
(2) Schiffer, L.; Barnard, L.; Baranowski, E. S.; Gilligan, L. C.; Taylor, A. E.; Arlt, W.; Shackleton, C. H. L.; Storbeck, K.-H. Human Steroid Biosynthesis, Metabolism and Excretion Are Differentially Reflected by Serum and Urine Steroid Metabolomes: A Comprehensive Review. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology 2019, 194, 105439. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2019.105439.
(3) Beato, M.; Klug, J. Steroid Hormone Receptors: An Update. Human Reproduction Update 2000, 6 (3), 225–236. https://doi.org/10.1093/humupd/6.3.225.
(4) Levin, E. R.; Hammes, S. R. Nuclear Receptors Outside the Nucleus: Extranuclear Signalling by Steroid Receptors. Nat Rev Mol Cell Biol 2016, 17 (12), 783–797. https://doi.org/10.1038/nrm.2016.122.
(5) Miller, W. L.; Auchus, R. J. The Molecular Biology, Biochemistry, and Physiology of Human Steroidogenesis and Its Disorders. Endocrine Reviews 2011, 32 (1), 81–151. https://doi.org/10.1210/ER.2010-0013.
(6) Fleseriu, M.; Auchus, R.; Bancos, I.; Ben-Shlomo, A.; Bertherat, J.; Biermasz, N. R.; Boguszewski, C. L.; Bronstein, M. D.; Buchfelder, M.; Carmichael, J. D.; Casanueva, F. F.; Castinetti, F.; Chanson, P.; Findling, J.; Gadelha, M.; Geer, E. B.; Giustina, A.; Grossman, A.; Gurnell, M.; Ho, K.; Ioachimescu, A. G.; Kaiser, U. B.; Karavitaki, N.; Katznelson, L.; Kelly, D. F.; Lacroix, A.; McCormack, A.; Melmed, S.; Molitch, M.; Mortini, P.; Newell-Price, J.; Nieman, L.; Pereira, A. M.; Petersenn, S.; Pivonello, R.; Raff, H.; Reincke, M.; Salvatori, R.; Scaroni, C.; Shimon, I.; Stratakis, C. A.; Swearingen, B.; Tabarin, A.; Takahashi, Y.; Theodoropoulou, M.; Tsagarakis, S.; Valassi, E.; Varlamov, E. V.; Vila, G.; Wass, J.; Webb, S. M.; Zatelli, M. C.; Biller, B. M. K. Consensus on Diagnosis and Management of Cushing’s Disease: A Guideline Update. The Lancet Diabetes & Endocrinology 2021, 9 (12), 847–875. https://doi.org/10.1016/S2213-8587(21)00235-7.
(7) Vilela, L. A. P.; Almeida, M. Q. Diagnosis and Management of Primary Aldosteronism. Archives of Endocrinology and Metabolism 2017, 61 (3), 305–312. https://doi.org/10.1590/2359-3997000000274.
(8) Fassnacht, M.; Arlt, W.; Bancos, I.; Dralle, H.; Newell-Price, J.; Sahdev, A.; Tabarin, A.; Terzolo, M.; Tsagarakis, S.; Dekkers, O. M. Management of Adrenal Incidentalomas: European Society of Endocrinology Clinical Practice Guideline in Collaboration with the European Network for the Study of Adrenal Tumors. European Journal of Endocrinology 2016, 175 (2), G1–G34. https://doi.org/10.1530/EJE-16-0467.
(9) Jarow, J. P. Endocrine Causes of Male Infertility. Urologic Clinics 2003, 30 (1), 83–90. https://doi.org/10.1016/S0094-0143(02)00117-9.
(10) Unuane, D.; Tournaye, H.; Velkeniers, B.; Poppe, K. Endocrine Disorders & Female Infertility. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab 2011, 25 (6), 861–873. https://doi.org/10.1016/j.beem.2011.08.001.
(11) Utriainen, P.; Laakso, S.; Liimatta, J.; Jääskeläinen, J.; Voutilainen, R. Premature Adrenarche - A Common Condition with Variable Presentation. Hormone Research in Paediatrics 2015, 83 (4), 221–231. https://doi.org/10.1159/000369458.
(12) Speiser, P. W.; Arlt, W.; Auchus, R. J.; Baskin, L. S.; Conway, G. S.; Merke, D. P.; Meyer-Bahlburg, H. F. L.; Miller, W. L.; Murad, M. H.; Oberfield, S. E.; White, P. C. Congenital Adrenal Hyperplasia Due to Steroid 21-Hydroxylase Deficiency: An Endocrine Society Clinical Practice Guideline. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2018, 103 (11), 4043–4088. https://doi.org/10.1210/JC.2018-01865.
(13) Nieman, L. K.; Biller, B. M. K.; Findling, J. W.; Newell-Price, J.; Savage, M. O.; Stewart, P. M.; Montori, V. M.; Edwards, H. The Diagnosis of Cushing’s Syndrome: An Endocrine Society Clinical Practice Guideline. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2008, 93 (5), 1526–1540. https://doi.org/10.1210/JC.2008-0125.
(14) Bornstein, S. R.; Allolio, B.; Arlt, W.; Barthel, A.; Don-Wauchope, A.; Hammer, G. D.; Husebye, E. S.; Merke, D. P.; Murad, M. H.; Stratakis, C. A.; Torpy, D. J. Diagnosis and Treatment of Primary Adrenal Insufficiency: An Endocrine Society Clinical Practice Guideline. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 2016, 101 (2), 364–389. https://doi.org/10.1210/JC.2015-1710.
(15) Krone, N.; Hughes, B. A.; Lavery, G. G.; Stewart, P. M.; Arlt, W.; Shackleton, C. H. L. Gas Chromatography/Mass Spectrometry (GC/MS) Remains a Pre-Eminent Discovery Tool in Clinical Steroid Investigations Even in the Era of Fast Liquid Chromatography Tandem Mass Spectrometry (LC/MS/MS). The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology 2010, 121 (3), 496–504. https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2010.04.010.
(16) Grebe, S. K.; Singh, R. J. LC-MS/MS in the Clinical Laboratory – Where to From Here? Clin Biochem Rev 2011, 32 (1), 5–31.
(17) Conklin, S. E.; Knezevic, C. E. Advancements in the Gold Standard: Measuring Steroid Sex Hormones by Mass Spectrometry. Clinical Biochemistry 2020, 82, 21–32. https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2020.03.008.
(18) Seger, C.; Salzmann, L. After Another Decade: LC–MS/MS Became Routine in Clinical Diagnostics. Clinical Biochemistry 2020, 82, 2–11. https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2020.03.004.
Zu unserem umfassenden Angebot an Immunassays gehören eine Reihe spezialisierter diagnostischer Immunassays für die Endokrinologie, Immunologie und zur Untersuchung von Autoimmunkrankheiten, sowie zur Diagnose von zahlreichen Infektionskrankheiten. Wir sind Pioniere und Marktführer in der Speicheldiagnostik, und bieten seit über 40 Jahren ein breites Portfolio an Lumineszenz- und ELISA-basierten Tests.
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Sämtliche Produkte sind nur für den Verkauf an Laborpersonal verfügbar und möglicherweise nicht in allen Ländern erhältlich. Bitte lesen und befolgen Sie immer die Arbeitsanleitung. Kontaktieren Sie uns gerne für weitere Informationen.
Design und Herstellung aller unserer Assays erfüllen die höchsten Anforderungen globaler Richtlinien und Qualitätsstandards. Tecan ist unter ISO 9001:2015, ISO 13485:2016 zertifiziert und gemäß Medical Device Single Audit Program (MDSAP) von einer Benannten Stelle auditiert.
Als Teil der Tecan-Gruppe haben wir eine führende Marktposition in Diagnostik und Forschung. Wir verfügen über 40 Jahre Erfahrung in der Entwicklung, Herstellung und Bereitstellung von Immunassays auf Basis von Enzymreaktionen, Radiomarkierungen und Lumineszenz.
Unsere Bandbreite hochqualitativer Immunassays wird durch ein vielfältiges Portfolio automatisierter Lösungen ergänzt. So sind wir der perfekte Partner für Sie und Ihre Kunden.
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